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中文名稱

雞心乳酸脫氫酶(L-LDH)

所屬分類
數(shù)量
-
+
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產(chǎn)品描述
產(chǎn)品參數(shù)
英文名稱
L-Lactate dehydrogenase
縮寫
L-LDH
貨號
AA0094B
規(guī)格
規(guī)格可定制

 

一、產(chǎn)品介紹

外觀:

白色無定形粉末。

凍干緩沖液:

50mM PB-K,1mg/ml BSApH7.0

比  活  力:

≥70U/mg干粉(乳酸底物法);≥100U/mg干粉(丙酮酸底物法)。

穩(wěn)  定  性:

干粉于-20至少穩(wěn)定一年。

分  子  量:

~38kD (SDS-PAGE)

等  電  點(diǎn):

7.89

pH穩(wěn)定性 :

4.010.0穩(wěn)定 (500-1000U/L,2524hr)              Figure 1      

最  適pH

10.0-11.0 (乳酸底物法, Figure 4);7.0~8.0 (丙酮酸底物法, Figure 5)                         

最適溫度 

60                                         Figure 2 and 6

熱穩(wěn)定性 

1kU/L時(shí)60加熱30min不失活(乳酸底物法)。        Figure 3

穩(wěn)  定  劑:

添加≥1mg/ml BSA有助于稀釋樣品的穩(wěn)定。

復(fù)      溶:

用去離子水或50mM PB-K (pH 7.0) 復(fù)溶。

 

 

 

 

 

 

 

 

 

二、乳酸底物法測定酶活

2.1 測定原理

在強(qiáng)堿性條件下,雞心L-LDH催化L-乳酸與NAD+反應(yīng)生成丙酮酸和NADH。在一定范圍內(nèi)NADH的生成速率與L-LDH活力成正比。在340nm處測定NADH的生成速率,根據(jù)酶活計(jì)算公式即可測出酶活力。1個(gè)酶活單位(U)等于在下述反應(yīng)條件下每分鐘生成1微摩爾NADH所需的酶量。

2.2   檢測方法

1.     酶稀釋液:50mM PB-K,1mg/ml BSA0.1% NaN3,pH7.0。過0.22um濾膜后2-8保存,保質(zhì)期1年。

2.     Buffer350mM CAPSMr=221.32),0.1% NaN3,pH10.0 (25),過0.22um濾膜后2-8保存,保質(zhì)期一個(gè)月。

3.     R11M 乳酸鋰,0.1% NaN3。過0.22um濾膜后2-8保存,保質(zhì)期一個(gè)月。

4.     R29mM NAD ,0.1% NaN3。過0.22um濾膜后2-8保存,保質(zhì)期為一周。

1.     R臨用前按Buffer : R1 : R2=920ul : 80ul : 200ul比例混合,2-8保存,保質(zhì)期1天。用前恢復(fù)室溫。

2.     待測酶液S稱量所需的酶粉,用去離子水或50mM PB-K (pH 7.0)復(fù)溶,定容到既定體積配制成待測酶液S。用酶稀釋液將其稀釋至200-2000U/L內(nèi)的2-5個(gè)梯度。

3.     酶活檢測步驟

 

1)   1200ulR添加至“d=1.0cm”的石英比色皿中,37℃溫育1min;然后加入20ul待測酶液 S,充分混勻后,37℃反應(yīng)至3min;記錄第2-3min內(nèi)OD340的變化,并計(jì)算每分鐘吸光值變化率(△As/min)。測活歷程如下:

 

2)   重復(fù)以上步驟,用20μl酶稀釋液作為陰性對照。記錄空白吸光值(△Ab/min)。

1.     計(jì)算公式


 

 

Vt

:反應(yīng)液總體積(ml

ε

NADH摩爾吸光系數(shù)6.22cm2/micromole

Vs

:樣品體積(ml

d

:比色杯光程(1cm

D

:稀釋倍數(shù)

A/min

△As/min-△Ab/min

方向

:升反應(yīng)

線性

0-2000U/L,建議稀釋至200-2000U/L。

2.3 酶性質(zhì)附圖(乳酸底物法)

 

三、丙酮酸底物法測定酶活                

3.1  測定原理

 

在中性偏堿條件下,雞心L-LDH催化丙酮酸和NADH反應(yīng)生成L-乳酸與NAD+。在一定范圍內(nèi)NADH的消耗速率與L-LDH活力成正比。在340nm處測定NADH的消耗速率,根據(jù)酶活計(jì)算公式即可測出酶活力。1個(gè)酶活單位(U)等于在下述反應(yīng)條件下每分鐘消耗1微摩爾 NADH所需的酶量。

3.1  檢測方法

1.     Buffer100mM PB-KpH7.0。

2.     酶稀釋液:50mM PB-K1mg/ml BSA,0.1%NaN3,pH7.0。過0.22um濾膜后2-8保存,保質(zhì)期1年。

3.     R1100mM PB-K,25.4mM丙酮酸鈉鹽或鉀鹽,0.1%NaN3,pH7.0。過0.22um濾膜后2-8保存,保質(zhì)期一個(gè)月。

4.     R210mM Tris-HCl, 10mg/ml NADH,0.1%NaN3,pH9.7,過0.22um濾膜后2-8保存,保質(zhì)期1周。

5.     R臨用前按Buffer : R1 : R2=3000ul : 100ul : 50ul比例混合,2-8保存,保質(zhì)期1天。用前恢復(fù)室溫當(dāng)OD340<0.8時(shí),重新配置R。若OD340依然小于0.8,請重新配置R2。

6.     待測酶液S稱量所需的酶粉,用去離子水或50mM PB-K (pH 7.0)復(fù)溶,定容到既定體積配制成待測酶液S。用酶稀釋液將其稀釋至500-3000U/L范圍內(nèi)的2-5個(gè)梯度。

7.     酶活檢測步驟

 

1)   1200ulR添加至“d=1.0cm”的石英比色皿中,37℃溫育1min;然后加入20ul待測酶液 S,充分混勻后,37℃反應(yīng)至3min;記錄第2-3min內(nèi)OD340的變化,并計(jì)算每分鐘吸光值變化率(△As/min)。測活歷程如下:

 

2)   重復(fù)以上步驟,用20μl酶稀釋液作為陰性對照。記錄空白吸光值(△Ab/min)。

 

8.     計(jì)算公式

        

 

Vt

:反應(yīng)液總體積(ml

ε

NADH摩爾吸光系數(shù)6.22cm2/micromole

Vs

:樣品體積(ml

d

:比色杯光程(1cm

D

:稀釋倍數(shù)

A/min

△As/min-△Ab/min

方向

:降反應(yīng)

線性

0-3000U/L,建議稀釋至500-3000U/L。

3.3 酶性質(zhì)附圖(丙酮酸底物法)

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