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一、產(chǎn)品介紹
外觀: |
白色無定形粉末。 |
凍干緩沖液: |
50mM PB-K,1mg/ml BSA,pH7.0 |
比 活 力: |
≥70U/mg干粉(乳酸底物法);≥100U/mg干粉(丙酮酸底物法)。 |
穩(wěn) 定 性: |
干粉于-20℃至少穩(wěn)定一年。 |
分 子 量: |
~38kD (SDS-PAGE) |
等 電 點(diǎn): |
7.89 |
pH穩(wěn)定性 : |
4.0~10.0穩(wěn)定 (500-1000U/L,25℃,24hr) (Figure 1) |
最 適pH : |
10.0-11.0 (乳酸底物法, Figure 4);7.0~8.0 (丙酮酸底物法, Figure 5) |
最適溫度 : |
60℃ (Figure 2 and 6) |
熱穩(wěn)定性 : |
1kU/L時(shí)60℃加熱30min不失活(乳酸底物法)。 (Figure 3) |
穩(wěn) 定 劑: |
添加≥1mg/ml BSA有助于稀釋樣品的穩(wěn)定。 |
復(fù) 溶: |
用去離子水或50mM PB-K (pH 7.0) 復(fù)溶。 |
二、乳酸底物法測定酶活
2.1 測定原理
在強(qiáng)堿性條件下,雞心L-LDH催化L-乳酸與NAD+反應(yīng)生成丙酮酸和NADH。在一定范圍內(nèi)NADH的生成速率與L-LDH活力成正比。在340nm處測定NADH的生成速率,根據(jù)酶活計(jì)算公式即可測出酶活力。1個(gè)酶活單位(U)等于在下述反應(yīng)條件下每分鐘生成1微摩爾NADH所需的酶量。
2.2 檢測方法
1. 酶稀釋液:50mM PB-K,1mg/ml BSA,0.1% NaN3,pH7.0。過0.22um濾膜后2-8℃保存,保質(zhì)期1年。
2. Buffer:350mM CAPS(Mr=221.32),0.1% NaN3,pH10.0 (25℃),過0.22um濾膜后2-8℃保存,保質(zhì)期一個(gè)月。
3. R1:1M 乳酸鋰,0.1% NaN3。過0.22um濾膜后2-8℃保存,保質(zhì)期一個(gè)月。
4. R2:9mM NAD ,0.1% NaN3。過0.22um濾膜后2-8℃保存,保質(zhì)期為一周。
1. R:臨用前按Buffer : R1 : R2=920ul : 80ul : 200ul比例混合,2-8℃保存,保質(zhì)期1天。用前恢復(fù)室溫。
2. 待測酶液S:稱量所需的酶粉,用去離子水或50mM PB-K (pH 7.0)復(fù)溶,定容到既定體積配制成待測酶液S。用酶稀釋液將其稀釋至200-2000U/L內(nèi)的2-5個(gè)梯度。
3. 酶活檢測步驟
1) 將1200ul的R添加至“d=1.0cm”的石英比色皿中,37℃溫育1min;然后加入20ul待測酶液 S,充分混勻后,37℃反應(yīng)至3min;記錄第2-3min內(nèi)OD340的變化,并計(jì)算每分鐘吸光值變化率(△As/min)。測活歷程如下:
2) 重復(fù)以上步驟,用20μl酶稀釋液作為陰性對照。記錄空白吸光值(△Ab/min)。
1. 計(jì)算公式
Vt |
:反應(yīng)液總體積(ml) |
ε |
:NADH摩爾吸光系數(shù)6.22(cm2/micromole) |
Vs |
:樣品體積(ml) |
d |
:比色杯光程(1cm) |
D |
:稀釋倍數(shù) |
△A/min |
:△As/min-△Ab/min |
方向 |
:升反應(yīng) |
線性 |
:0-2000U/L,建議稀釋至200-2000U/L。 |
2.3 酶性質(zhì)附圖(乳酸底物法)
三、丙酮酸底物法測定酶活
3.1 測定原理
在中性偏堿條件下,雞心L-LDH催化丙酮酸和NADH反應(yīng)生成L-乳酸與NAD+。在一定范圍內(nèi)NADH的消耗速率與L-LDH活力成正比。在340nm處測定NADH的消耗速率,根據(jù)酶活計(jì)算公式即可測出酶活力。1個(gè)酶活單位(U)等于在下述反應(yīng)條件下每分鐘消耗1微摩爾 NADH所需的酶量。
3.1 檢測方法
1. Buffer:100mM PB-K,pH7.0。
2. 酶稀釋液:50mM PB-K,1mg/ml BSA,0.1%NaN3,pH7.0。過0.22um濾膜后2-8℃保存,保質(zhì)期1年。
3. R1:100mM PB-K,25.4mM丙酮酸鈉鹽或鉀鹽,0.1%NaN3,pH7.0。過0.22um濾膜后2-8℃保存,保質(zhì)期一個(gè)月。
4. R2:10mM Tris-HCl, 10mg/ml NADH,0.1%NaN3,pH9.7,過0.22um濾膜后2-8℃保存,保質(zhì)期1周。
5. R:臨用前按Buffer : R1 : R2=3000ul : 100ul : 50ul比例混合,2-8℃保存,保質(zhì)期1天。用前恢復(fù)室溫當(dāng)OD340<0.8時(shí),重新配置R。若OD340依然小于0.8,請重新配置R2。
6. 待測酶液S:稱量所需的酶粉,用去離子水或50mM PB-K (pH 7.0)復(fù)溶,定容到既定體積配制成待測酶液S。用酶稀釋液將其稀釋至500-3000U/L范圍內(nèi)的2-5個(gè)梯度。
7. 酶活檢測步驟
1) 將1200ul的R添加至“d=1.0cm”的石英比色皿中,37℃溫育1min;然后加入20ul待測酶液 S,充分混勻后,37℃反應(yīng)至3min;記錄第2-3min內(nèi)OD340的變化,并計(jì)算每分鐘吸光值變化率(△As/min)。測活歷程如下:
2) 重復(fù)以上步驟,用20μl酶稀釋液作為陰性對照。記錄空白吸光值(△Ab/min)。
8. 計(jì)算公式
Vt |
:反應(yīng)液總體積(ml) |
ε |
:NADH摩爾吸光系數(shù)6.22(cm2/micromole) |
Vs |
:樣品體積(ml) |
d |
:比色杯光程(1cm) |
D |
:稀釋倍數(shù) |
△A/min |
:△As/min-△Ab/min |
方向 |
:降反應(yīng) |
線性 |
:0-3000U/L,建議稀釋至500-3000U/L。 |
3.3 酶性質(zhì)附圖(丙酮酸底物法)
IVD原料